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BTN60706 一管式DNA胶回收试剂
发布时间:2017-09-30 19:37 | 点击次数:436
一管式DNA胶回收试剂说明书
产品编号:BTN60706
规格:30T/100T
产品及特点:
本产品可以直接从溶化的琼脂糖凝胶中沉淀回收单双链DNA 的产品,也堪称最快速的胶回收试剂,操作时间只有玻璃奶式和柱式胶回收方法的1/3 左右。本产品也可以用于单双链RNA 胶回收。
1. 超快,整个过程不到15分钟(对一个样品而言),由溶胶(3分钟),放置(2分钟),沉淀(5分钟)和两次洗涤(各1-2分钟)几步组成。
2. 纯度高,回收产物可以直接用于连接、酶切、PCR、测序等各种反应,不影响后续酶反应。
3. 回收率高,一般大于50%。
4. 适用范围广,可用于回收普通琼脂糖凝胶能够分离的DNA 片段(一般在100 bp-50 Kb 之间),而柱式同类产品几乎都不能回收50 Kb 的超大片段。
5. 一管式操作,不需要任何样品转移步骤,使大片段DNA 保持完整,同时减少了污染的可能。
6. 既可用于回收单双链DNA,又可用于回收单双链RNA。
7. 扩容性好,可以在一个离心管中(包括15 mL 或50 mL 离心管)进行大规模回收,没有最大吸附量的限制;而柱式胶回收试剂都受最大吸附量的限制。
规格及成分:
保存条件:
常温运输, 4℃保存,有效期一年。
溶液A 呈淡黄色,溶液B 呈红色,如果颜色发生变化,则表示pH 已经改变,请弃之不用。溶液C 为无色液体,会在瓶底产生少量晶体状产生沉淀,用前无需溶化,避开沉淀直接取上清液使用)。
自备试剂:
TE 或无菌水。
使用方法:
1. 从琼脂凝胶上切下目的 DNA 片段,放入 1.5 mL 离心管中。尽可能多地去掉不含DNA 的胶。如果方便最好称重以便估计需要的溶胶液(空的1.5 mL 离心管EP 约0.9 克,一片普通胶片的重量在0.05-0.1 克左右)。
2. 按0.1 克胶加300 uL 溶液A 的比例加入溶液A,65℃保温3分钟使胶融化。其间可用摇晃几次以促进凝胶融化。如果放量使用,溶化胶的时间可能需要延长。
3. 待胶完全溶化后,按0.1 克胶加100 uL 溶液B 的比例加入溶液B, 充分混匀。如果回收20 Kb 以上的DNA 片段,混匀时需要温和震荡;对20 Kb 以下的DNA 片段,可以剧烈震荡。
4. 室温静置至少2分钟,此时管内将出现大量红色颗粒状沉淀。此步十分关键,不能省略而直接离心。
5. 13000 g 室温离心5分钟后, 小心吸弃上清,管底将有黄豆大小的红色沉淀。
6. 加入0.8 mL 溶液C,充分震荡混匀。注意:溶液C 瓶底有晶体状沉淀,用前无需溶解,但取用溶液C 时需要避开沉淀。
7. 13000 g 室温离心2分钟,小心吸弃上清,管底将有芝麻大小的白色沉淀。
8. 再用0.2 mL 溶液C 重复第6-7 步一次,管底还有芝麻大小的白色沉淀。
9. 小心吸弃上清后即得纯化的DNA 沉淀,加入少量TE 或水,充分吹打溶解。最后还会有少量白色不溶沉淀,属于正常现象。
疑难解答:
Q:电泳为何不能检测到回收的DNA?
A:最可能原因是各步加入溶液后没有充分震荡混匀,其次是沉淀在各步吸弃上清时候不小心吸走而丢失,三是溶液A和溶液B的pH发生改变。
Q:电泳时为何有残留荧光物在加样孔中?
A:可能是琼脂糖凝胶中的杂质吸附的DNA,吸取DNA 样品时最好短暂离心,只取上清液。这些不溶杂质一般不影响后续反应。使用高纯度的琼脂糖可以减少杂杂质的污染。我们一般使用OXOID 的琼脂糖,得到的DNA 可以用于常见的分子生物学后续反应。
产品编号:BTN60706
规格:30T/100T
产品及特点:
本产品可以直接从溶化的琼脂糖凝胶中沉淀回收单双链DNA 的产品,也堪称最快速的胶回收试剂,操作时间只有玻璃奶式和柱式胶回收方法的1/3 左右。本产品也可以用于单双链RNA 胶回收。
1. 超快,整个过程不到15分钟(对一个样品而言),由溶胶(3分钟),放置(2分钟),沉淀(5分钟)和两次洗涤(各1-2分钟)几步组成。
2. 纯度高,回收产物可以直接用于连接、酶切、PCR、测序等各种反应,不影响后续酶反应。
3. 回收率高,一般大于50%。
4. 适用范围广,可用于回收普通琼脂糖凝胶能够分离的DNA 片段(一般在100 bp-50 Kb 之间),而柱式同类产品几乎都不能回收50 Kb 的超大片段。
5. 一管式操作,不需要任何样品转移步骤,使大片段DNA 保持完整,同时减少了污染的可能。
6. 既可用于回收单双链DNA,又可用于回收单双链RNA。
7. 扩容性好,可以在一个离心管中(包括15 mL 或50 mL 离心管)进行大规模回收,没有最大吸附量的限制;而柱式胶回收试剂都受最大吸附量的限制。
规格及成分:
| 成分 | 30T | 100T |
| 溶液A | 9ml | 30ml |
| 溶液B | 3ml | 10ml |
| 溶液C | 30ml | 100ml |
| 说明书 | 1份 | 1份 |
常温运输, 4℃保存,有效期一年。
溶液A 呈淡黄色,溶液B 呈红色,如果颜色发生变化,则表示pH 已经改变,请弃之不用。溶液C 为无色液体,会在瓶底产生少量晶体状产生沉淀,用前无需溶化,避开沉淀直接取上清液使用)。
自备试剂:
TE 或无菌水。
使用方法:
1. 从琼脂凝胶上切下目的 DNA 片段,放入 1.5 mL 离心管中。尽可能多地去掉不含DNA 的胶。如果方便最好称重以便估计需要的溶胶液(空的1.5 mL 离心管EP 约0.9 克,一片普通胶片的重量在0.05-0.1 克左右)。
2. 按0.1 克胶加300 uL 溶液A 的比例加入溶液A,65℃保温3分钟使胶融化。其间可用摇晃几次以促进凝胶融化。如果放量使用,溶化胶的时间可能需要延长。
3. 待胶完全溶化后,按0.1 克胶加100 uL 溶液B 的比例加入溶液B, 充分混匀。如果回收20 Kb 以上的DNA 片段,混匀时需要温和震荡;对20 Kb 以下的DNA 片段,可以剧烈震荡。
4. 室温静置至少2分钟,此时管内将出现大量红色颗粒状沉淀。此步十分关键,不能省略而直接离心。
5. 13000 g 室温离心5分钟后, 小心吸弃上清,管底将有黄豆大小的红色沉淀。
6. 加入0.8 mL 溶液C,充分震荡混匀。注意:溶液C 瓶底有晶体状沉淀,用前无需溶解,但取用溶液C 时需要避开沉淀。
7. 13000 g 室温离心2分钟,小心吸弃上清,管底将有芝麻大小的白色沉淀。
8. 再用0.2 mL 溶液C 重复第6-7 步一次,管底还有芝麻大小的白色沉淀。
9. 小心吸弃上清后即得纯化的DNA 沉淀,加入少量TE 或水,充分吹打溶解。最后还会有少量白色不溶沉淀,属于正常现象。
疑难解答:
Q:电泳为何不能检测到回收的DNA?
A:最可能原因是各步加入溶液后没有充分震荡混匀,其次是沉淀在各步吸弃上清时候不小心吸走而丢失,三是溶液A和溶液B的pH发生改变。
Q:电泳时为何有残留荧光物在加样孔中?
A:可能是琼脂糖凝胶中的杂质吸附的DNA,吸取DNA 样品时最好短暂离心,只取上清液。这些不溶杂质一般不影响后续反应。使用高纯度的琼脂糖可以减少杂杂质的污染。我们一般使用OXOID 的琼脂糖,得到的DNA 可以用于常见的分子生物学后续反应。


