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BTN80810 一站式SDS-PAGE电泳套装
发布时间:2017-09-30 20:46 | 点击次数:209
一站式SDS-PAGE电泳套装说明书
产品编号:BTN80810
规格:30T
产品及特点:
SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)是目前电泳法变性分离蛋白质的主要方法,但是单独配制各种溶液十分繁琐,为此我们公司开发了本产品。它具有下列特点:
1. 一站式,即开即用,用户不需单独准备各种成分,十分方便。
2. 安全,将实验人员接触粉末状丙烯酰胺的可能降到最低。
3. 灵活,分开提供的丙烯酰胺和甲叉双丙烯酰胺便于配制各种比例和浓度的SDS-PAGE,满足分离各种大小不同的蛋白质的要求。
4. 使用改良的浓缩胶缓冲液,由于其含有染料,制备的浓缩胶呈蓝色,便于上样时识别加样孔。
5. 电泳后可直接用于考染、银染、Western杂交等实验。
规格及成分:
保存条件:
常温运输和保存,但TEMED和5×SDS-PAGE上样液需低温运输,分别在4℃和-20℃有效期一年。
自备试剂:
去离子水。
使用方法:
1. 第一次使用本产品时需先配制30%丙烯酰胺溶液:在本产品提供的装有60克丙烯酰胺干粉的塑料瓶中加入146 mL自备的去离子水,充分摇晃直到溶解即得200 mL 30%丙烯酰胺溶液(用手大约摇10-20分钟)。
2. 第一次使用本产品时还需配制30%丙烯酰胺-甲叉双丙烯酰胺(19:1)溶液(30% AB溶液,下同): 不同实验需要加入不同比例的甲叉双丙烯酰胺。对SDS-PAGE电泳,丙烯酰胺与甲叉双丙烯酰胺比例一般在19:1左右,因为此时PAGE胶的孔径最小,分辨率最高。制备方法是将3g甲叉双丙烯酰胺干粉加入到200 mL上步配好的30%丙烯酰胺溶液中(注意:甲叉双丙烯酰胺干粉有神经毒性,避免吸入粉末)。配好的30%AB溶液最好4℃避光保存并在1月内用完。
3. 根据平板的面积和胶的厚度估计需要配制的浓缩胶和分离胶的体积。并根据要分离的蛋白质的大小确定选择浓缩胶和分离胶的浓度,参考下表:
注:如果上样体积少于10μL,可以不需要浓缩胶。
4. 配制10%的APS(过硫酸铵):称0.1克过APS干粉到1 mL去离子水中,摇晃溶解。配制好的10%的APS溶液可以在4℃存放一周。
5. 配制分离胶:在一个25 mL的三角瓶中,先按下表的用量加入水、30%AB溶液和4×分离胶缓冲液。以下是配制10 mL胶的用量,更大体积则各成分用量需按比例增加。丙烯酰胺溶液有神经毒性,一定要戴手套操作。
6. 配制浓缩胶(一般使用4%的浓度):在一个25 mL的三角瓶中,先按下表的用量加入水、30%AB溶液和4×浓缩胶缓冲液。以下是配制10 mL 4%浓缩胶的用量,丙烯酰胺溶液具有神经毒性,一定要戴手套操作。
7. 将分离胶和浓缩胶溶液摇晃混匀,抽真空10-15分钟以去除溶液中的氧气(氧气能抑制丙烯酰胺聚合反应,不去除将影响丙烯酰胺聚合反应)。
8. 分别加入50 μL 10%APS和30-50 μL TEMED(这是配制10 mL分离胶和浓缩胶的用量,更大体积的胶则用量需按比例增加),迅速摇匀。
9. 先灌分离胶,在胶的液面距离顶部1.5 cm的时候,停止灌胶。
10. 由于分离胶比重较大,可以立即在上面灌浓缩胶,但灌注时必须小心,不要破坏分离胶和浓缩胶的液面,在浓缩胶液面达到顶部时停止灌胶,插入梳子,室温聚合30-60分钟。如果不能做到小心灌浓缩胶,则必须待分离胶室温聚合30-60分钟后再灌制。
11. 拔出梳子,用1×SDS-PAGE电泳液冲洗加样孔。
12. 将凝胶板固定在电泳装置上,往上槽和下槽加入足够的1×SDS-PAGE电泳液。本产品提供20升的SDS-PAGE电泳液干粉,将所有干粉溶解在2 L水中即得10×SDS-PAGE电泳液,用时再稀释成1×工作液。
13. 在蛋白质样品中加入5×SDS-PAGE上样液(4μL样品中加1μL上样液),100℃煮沸3-5分钟。短暂离心,取上清上样。
14. 先用10 mA的电流电泳(对0.75mm厚×14cm×14cm的胶)直到染料进入从浓缩胶进入分离胶。
15. 将电流增加到15 mA,直到染料进入分离胶底部时终止电泳,取出凝胶进行后续的实验处理。
产品编号:BTN80810
规格:30T
产品及特点:
SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)是目前电泳法变性分离蛋白质的主要方法,但是单独配制各种溶液十分繁琐,为此我们公司开发了本产品。它具有下列特点:
1. 一站式,即开即用,用户不需单独准备各种成分,十分方便。
2. 安全,将实验人员接触粉末状丙烯酰胺的可能降到最低。
3. 灵活,分开提供的丙烯酰胺和甲叉双丙烯酰胺便于配制各种比例和浓度的SDS-PAGE,满足分离各种大小不同的蛋白质的要求。
4. 使用改良的浓缩胶缓冲液,由于其含有染料,制备的浓缩胶呈蓝色,便于上样时识别加样孔。
5. 电泳后可直接用于考染、银染、Western杂交等实验。
规格及成分:
| 成分 | 规格 |
| 丙烯酰胺干粉 | 60g |
| 甲叉双丙烯酰胺干粉 | 3g |
| 分离胶缓冲液,4× | 200ml |
| 浓缩胶缓冲液,4×(含染料) | 100ml |
| TEMED | 1.5ml |
| 过硫酸铵(干粉) | 1g |
| SDS-PAGE上样液,5× | 1套(1mL) |
| SDS-PAGE电泳液,1×(干粉) | 1套(20L) |
| 说明书 | 1份 |
常温运输和保存,但TEMED和5×SDS-PAGE上样液需低温运输,分别在4℃和-20℃有效期一年。
自备试剂:
去离子水。
使用方法:
1. 第一次使用本产品时需先配制30%丙烯酰胺溶液:在本产品提供的装有60克丙烯酰胺干粉的塑料瓶中加入146 mL自备的去离子水,充分摇晃直到溶解即得200 mL 30%丙烯酰胺溶液(用手大约摇10-20分钟)。
2. 第一次使用本产品时还需配制30%丙烯酰胺-甲叉双丙烯酰胺(19:1)溶液(30% AB溶液,下同): 不同实验需要加入不同比例的甲叉双丙烯酰胺。对SDS-PAGE电泳,丙烯酰胺与甲叉双丙烯酰胺比例一般在19:1左右,因为此时PAGE胶的孔径最小,分辨率最高。制备方法是将3g甲叉双丙烯酰胺干粉加入到200 mL上步配好的30%丙烯酰胺溶液中(注意:甲叉双丙烯酰胺干粉有神经毒性,避免吸入粉末)。配好的30%AB溶液最好4℃避光保存并在1月内用完。
3. 根据平板的面积和胶的厚度估计需要配制的浓缩胶和分离胶的体积。并根据要分离的蛋白质的大小确定选择浓缩胶和分离胶的浓度,参考下表:
| 蛋白质大小范围(kD) | 最佳浓缩胶浓度 | 最佳分离胶浓度 |
| 15-45 | 4% | 15% |
| 15-60 | 4% | 12.5% |
| 18-75 | 4% | 10% |
| 30-120 | 4% | 7.5% |
| 60-200 | 不需要 | 5% |
4. 配制10%的APS(过硫酸铵):称0.1克过APS干粉到1 mL去离子水中,摇晃溶解。配制好的10%的APS溶液可以在4℃存放一周。
5. 配制分离胶:在一个25 mL的三角瓶中,先按下表的用量加入水、30%AB溶液和4×分离胶缓冲液。以下是配制10 mL胶的用量,更大体积则各成分用量需按比例增加。丙烯酰胺溶液有神经毒性,一定要戴手套操作。
| 胶浓度 | 用量(单位:mL) | ||
| 水 | 30%AB溶液 | 4×分离胶配胶液 | |
| 5% | 5.83 | 1.67 | 2.50 |
| 6% | 5.50 | 2.00 | 2.50 |
| 7% | 5.17 | 2.33 | 2.50 |
| 7.5% | 5.00 | 2.50 | 2.50 |
| 8% | 4.83 | 2.67 | 2.50 |
| 9% | 4.50 | 3.00 | 2.50 |
| 10% | 4.17 | 3.33 | 2.50 |
| 11% | 3.83 | 3.67 | 2.50 |
| 12% | 3.50 | 4.00 | 2.50 |
| 13% | 3.17 | 4.33 | 2.50 |
| 14% | 2.83 | 4.67 | 2.50 |
| 15% | 2.50 | 5.00 | 2.50 |
| 16% | 2.17 | 5.33 | 2.50 |
| 胶浓度 | 用量(单位:mL) | ||
| 水 | 30%AB溶液 | 4×浓缩胶缓冲液 (含蓝色染料) |
|
| 4% | 6.17 | 1.33 | 2.50 |
8. 分别加入50 μL 10%APS和30-50 μL TEMED(这是配制10 mL分离胶和浓缩胶的用量,更大体积的胶则用量需按比例增加),迅速摇匀。
9. 先灌分离胶,在胶的液面距离顶部1.5 cm的时候,停止灌胶。
10. 由于分离胶比重较大,可以立即在上面灌浓缩胶,但灌注时必须小心,不要破坏分离胶和浓缩胶的液面,在浓缩胶液面达到顶部时停止灌胶,插入梳子,室温聚合30-60分钟。如果不能做到小心灌浓缩胶,则必须待分离胶室温聚合30-60分钟后再灌制。
11. 拔出梳子,用1×SDS-PAGE电泳液冲洗加样孔。
12. 将凝胶板固定在电泳装置上,往上槽和下槽加入足够的1×SDS-PAGE电泳液。本产品提供20升的SDS-PAGE电泳液干粉,将所有干粉溶解在2 L水中即得10×SDS-PAGE电泳液,用时再稀释成1×工作液。
13. 在蛋白质样品中加入5×SDS-PAGE上样液(4μL样品中加1μL上样液),100℃煮沸3-5分钟。短暂离心,取上清上样。
14. 先用10 mA的电流电泳(对0.75mm厚×14cm×14cm的胶)直到染料进入从浓缩胶进入分离胶。
15. 将电流增加到15 mA,直到染料进入分离胶底部时终止电泳,取出凝胶进行后续的实验处理。


