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公司新闻

BTN131233 零背景T载体

发布时间:2017-10-03 17:33 |  点击次数:

零背景T载体说明书
产品编号:BTN131233
规格:20T
产品及特点:
本载体是经过独特改造的第二代T 载体,用户只需在一个PCR 引物上加上几个特殊的碱基,即可零背景克隆和定向克隆,只有当PCR 片段定向插入到本载体时,菌落才能生长,其他所有情况(如载体自连、目标PCR 片段的反向插入、非目标PCR 片段的正向和反向插入)下菌落均不能生长。原理如下:
 
本产品具有下列特点:
1. 零背景,阳性克隆率接近100%。
2. 连接效率高,30分钟可完成连接反应。
3. 简单,无需使用IPTG/X-Gal 进行蓝白筛选。
4. 连接产物可直接用于细菌转化。
5. 用途广,可用于PCR 产物克隆、TA 克隆、克隆后的DNA 测序、定向克隆。
6. 提供引物一对,可直接用于菌落PCR 检测。
格及成分:

成分 规格
克必隆零背景T 载体,(50 ng/μL) 20μl
高效连接液 150μl
引物1 50μl
引物2 50μl
说明书 1份
 
保存条件:
低温运输,-20℃保存,有效期一年。
自备试剂:
DNA片段等。
使用方法:
DNA片段的克隆实验
  • 在微量离心管中配制下列溶液,总体积为5μL。
成分 用量
克必隆零背景T载体 1μl
DNA片段 0.05 pmol~0.2 pmol
dH2O up to 5μL
注:在进行克隆时,Vector DNA 和Insert DNA 的摩尔比一般为1:2~10。
PCR 片段扩增用的2 条Primer 除了含有扩增目的片段用的序列外,还要在其5’端均加入TTTAA 5 个碱基。当进行定向克隆时,可以选择其中1条Primer 的5’端加入TTTAA 5 个碱基。
2. 加入 5 μL(等量)的高效连接液。
3. 16℃反应30分钟。注:室温(25℃)也能正常进行连接反应,但连接效率稍微降低;长片段PCR 产物(2 kb 以上)进行DNA 克隆时,连接反应时间请延长至数小时。
4. 全量(10 μL)加入至100 μL 的JM109 感受态细胞中,冰中放置30分钟。
5. 42℃加热45 秒钟后,再在冰中放置1分钟。
6. 加入 890 μL 的SOC 培养基,37℃振荡培养60分钟。
7. 在含有Amp 的L-琼脂平板培养基上培养,形成单菌落。
8. 挑选菌落,使用PCR 法确认载体中插入片段的长度大小。
注:由于Insert DNA 片段末端必须带有序列TTTAA,DNA 片段成功插入至克必隆零背景T 载体中后,bla 基因得以表达,因此使用本载体在Amp 抗性平板上生长的菌落基本都是阳性克隆,如果有必要进行阳性克隆检测时,建议使用PCR 方法,扩增用引物可以使用随本产品提供的引物即可,对菌落直接进行PCR 扩增。
疑难解答:
Q:怎样提高连接转化效率?
A: 1. 确认Insert DNA 片段的3’末端是否带有“A”尾。大部分的高保真DNA 聚合酶(KOD、Pfx、Pfu 等)扩增的PCR 产物是平滑末端,不能直接进行TA 克隆。
2. 纯化PCR 产物。最好使用切胶回收的PCR 片段,以除去PCR 产物中的非特异性片段和引物等杂质。
3. 请使用转化效率大于108 cfu/μg pUC19 DNA 的感受态细胞。
4. DNA 片段的立体结构、DNA 片段的长短都会影响克隆效率。一般情况下,大片段DNA 的克隆效率(连接效率与转化效率)偏低,此时可以延长连接反应时间,或采用电转化方法。
5. 进行切胶回收纯化DNA 片段时,不要使DNA 片段在紫外线下暴露时间过长。
6. 高效连接液尽量避免反复冻融。
7. 建议使用新配制的平板培养基。
8. 确保Insert DNA 两端均带有TTTAA 序列。
Q:欲对克隆DNA 片段进行测序时,使用何种引物?
A: 建议使用随本产品提供的引物对进行目的片段测序反应。
Q: 目的DNA 片段要亚克隆至其它载体(如:表达载体等),酶切位点应怎样选择?
A: 因载体上无多克隆酶切位点,进行亚克隆时,酶切位点可以根据亚克隆载体的情况进行选择。进行PCR 扩增时,应在PCR 扩增用引物上预先引入合适的酶切位点,克隆至本载体后再使用该限制酶切下目的DNA 片段,
然后亚克隆至目的载体中。
注意事项:
1. PCR 片段扩增用的2 条Primer 除了含有扩增目的片段用的序列外,还要在其5’端均加入TTTAA 5 个碱基。当进行定向克隆时,可以选择其中1条Primer 的5’端加入TTTAA 5 个碱基。
2. 克隆时使用的Insert DNA 片段(PCR 产物)建议进行切胶回收纯化,否则PCR 产物中的短片段DNA(甚至是电泳也无法确认的非特异性小片段)、残存引物等杂质都会影响TA 克隆效率 。
3. 按照本实验操作进行连接后,直接进行转化时的连接液不要超过20 μL。当要转化的DNA 量较大或准备进行电转化时,需对连接液进行乙醇沉淀,纯化DNA 后再进行转化。
4. 连接反应请在25℃以下进行,温度升高(>26℃)较难形成环状DNA。连接效率偏低时,可适当延长连接反应时间至数小时。
5. 本产品来源于pUC19 载体,因此,适合pUC19 载体的感受态细胞都可以使用,如:JM109 等。
6. 本制品是利用β-lactamase 缺失进行筛选,所以对筛选平板使用的氨苄青霉素(Amp)的质量要求较高,请使用高品质的氨苄青霉素(Amp),工作浓度为100 μg/mL。不要使用配制时间过长的氨苄青霉素(Amp)或平板。